张雅瑞 侯庆明
[收稿日期]2022-05-23; [修訂日期]2023-02-17
[基金项目]国家自然科学基金资助项目(8217051911)
[第一作者]张雅瑞(1997-),女,硕士研究生。
[通信作者]侯庆明(1969-),男,博士,教授,博士生导师。E-mail:qingminghou69@gmail.com。
[摘要] 目的
探讨右美托咪定(Dex)对皮质神经元氧糖剥夺/复氧(OGD/R)损伤的神经保护作用及其可能机制。
方法 培养孕18 d的SD大鼠胎鼠皮质神经元细胞,随机分为对照组(Sham组,加入有糖细胞外液置于正常培养箱中培养)、模型组(OGD/R组,加入无糖细胞外液,置于37 ℃厌氧箱中培养制备OGD/R细胞模型)、阳性药物对照组(OGD/R+LW6组,OGD/R模型细胞加入1 mmol/L的LW6处理1 h)、OGD/R+低浓度Dex组(OGD/R模型细胞加入0.1 μmol/L Dex处理1 h)、OGD/R+高浓度Dex组(OGD/R模型细胞加入1.0 μmol/L Dex处理1 h)。应用CCK-8比色法、免疫荧光方法检测各组细胞的存活率,Western blot方法检测各组低氧诱导因子1α(HIF-1α)、激活转录因子-6(ATF-6)及下游靶点C/EBP同源蛋白(CHOP)的表达水平。
结果 CCK-8比色及免疫荧光染色结果显示,各组神经元存活率差异有显著性(F=63.46,P<0.05);
两两比较显示,OGD/R组神经元存活率较Sham组显著降低(P<0.05),OGD/R+高浓度Dex组神经元存活率较OGD/R组显著提高(P<0.05)。Western blot结果显示,各组神经元HIF-1α、ATF-6、CHOP蛋白表达差异有显著性(F=80.30~155.36,P<0.05);
两两比较显示,OGD/R组HIF-1α、ATF-6、CHOP蛋白表达较Sham组升高(P<0.05),OGD/R+高浓度Dex组HIF-1α、ATF-6、CHOP蛋白表达较OGD/R组降低(P<0.05)。
结论 Dex通过抑制HIF-1α表达对OGD/R损伤的神经元模型发挥保护作用。
[关键词] 右美托咪定;
低氧诱导因子1α;
氧糖剥夺/复氧损伤;
激活转录因子6;
神经保护
[中图分类号] R338.2
[文献标志码] A
[文章编号] 2096-5532(2024)01-0012-05
doi:10.11712/jms.2096-5532.2024.60.004
[开放科学(资源服务)标识码(OSID)]
[网络出版] https://link.cnki.net/urlid/37.1517.R.20240228.1250.001;2024-03-01 17:30:08
Protective effects of dexmedetomidine against neuronal oxygen-glucose deprivation/reoxygenation injury
\ ZHANG Yarui, HOU Qingming
\ (Qingdao University Institute of Neurodegeneration And Neurorehabilitation, Qingdao 266071, China)
\; [Abstract]\ Objective\ To investigate the neuroprotective effects of dexmedetomidine (Dex) against oxygen-glucose deprivation/reoxygenation (OGD/R) injury of cortical neurons and its possible mechanism of action.
\ Methods\ The cortical neurons of fetal Sprague-Dawley rats (gestational age, 18 d) were cultured and then were randomly divided into sham group (cultured in a sugar-containing medium in normal incubator), OGD/R group (cultured in a sugar-free medium in an anaerobic incubator at 37 ℃ to prepare a neuronal OGD/R injury model), OGD/R+LW6 group (OGD/R neurons treated with 1 mmol/L LW6 for 1 h as a po-
sitive control), OGD/R+low-concentration Dex group (OGD/R neurons treated with 0.1 μmol/L Dex for 1 h), and OGD/R+high-concentration Dex group (OGD/R neurons treated with 1.0 μmol/L Dex for 1 h). The survival rate of cells was determined by co-
lorimetric assay with Cell Counting Kit-8 (CCK-8) and immunofluorescence assay. The expression levels of hypoxia-inducible factor-1α (HIF-1α), activating transcription factor 6 (ATF-6), and the downstream target C/EBP homologous protein (CHOP) were mea-
sured by Western blot.
\ Results\ According to CCK-8 and immunofluorescence assay results, there was a significant diffe-
rence in the survival rate of neurons between the groups (F=63.46,P<0.05). Pairwise comparison showed that the survival rate in the OGD/R group was significantly lower than that in the sham group (P<0.05); and the survival rate of the OGD/R+high-concentration Dex group was significantly increased compared with that of the OGD/R group (P<0.05). Western blot results showed significant differences in the expression of HIF-1α, ATF-6, and CHOP proteins (F=80.30-155.36,P<0.05). Pairwise comparison showed that the expression of HIF-1α, ATF-6, and CHOP was significantly higher in the OGD/R group than in the sham group (P<0.05); and the OGD/R+high-concentration Dex group showed significantly lower expression of HIF-1α, ATF-6, and CHOP compared with the OGD/R group, the differences are statistically significant (P<0.05).
\ Conclusion\ Dex inhibits HIF-1α expression to exert protective effects in the neuronal model of OGD/R injury.
[Key words]\ dexmedetomidine; hypoxia-inducible factor-1alpha; oxygen glucose deprivation/reoxygenation injury; activating transcription factor 6; neuroprotection
腦卒中是一种全球发病率高、致残率高、死亡率高的脑血管疾病[1],其中缺血性脑卒中占85%左右[2]。缺血性脑卒中发生时脑组织供血供氧突然中断,形成以神经元坏死为主的核心区及缺血半暗带[3-4]。氧供应中断和糖原消耗可引起神经功能的永久性缺陷[5],同时也会使相应部位周围的神经元形成低氧状态。低氧诱导因子1α(HIF-1α)是细胞在低氧状态下的一种转录因子,HIF-1α通过对其下游靶基因的调控,在血管再生、炎症、细胞增殖分化及肿瘤生长等方面均起到重要的调节用[6]。HIF-1α的过度激活(持续高表达)可通过促凋亡途径导致细胞死亡,抑制HIF-1α的表达可能会减轻氧糖剥夺/复氧(OGD/R)损伤[7]。右美托咪定(Dex)是近年来应用于临床麻醉和镇静的新型、高选择性α2肾上腺素受体激动剂,具有镇静、镇痛、减轻炎症反应和应激反应保护器官等作用[8]。已有研究表明,Dex通过抑制HIF-1α的活性在心肌疾病中起着保护作用[9],但在神经元损伤中的作用及其机制尚不明确。本研究探讨Dex能否通过抑制HIF-1α的表达降低内质网应激从而减轻OGD/R损伤所导致的皮质神经元损伤,为开发有效的OGD/R损伤治疗策略提供依据。
1 材料与方法
1.1 实验材料
SPF级、孕18 d的健康SD大鼠购自济南朋悦实验动物繁育有限公司,饲养于青岛大学医学部实验动物中心。主要试剂:Dex购自青岛大学附属医院,用9 g/L氯化钠溶液配制低浓度(0.1 μmol/L)和高浓度(1.0 μmol/L)的Dex溶液,置于4 ℃冰箱保存备用。细胞培养试剂neurobasal medium、B-27 Supplement、DMEM-H-Glucose、青霉素-链霉素(100×)、Trypsin-EDTA、HEPES-Buffer、glutaMax 100×均购自Gibco公司;胎牛血清购自四季青公司;
CCK-8试剂盒购自北京Bioss生物技术有限公司;
激活转录因子-6(ATF-6)及C/EBP同源蛋白(CHOP)购自Affinity抗体公司;
β-actin购自武汉三鹰生物技术公司;
HRP标记的兔来源的二抗购自北京索莱宝科技有限公司;
苯甲基磺酰氟(PMSF)、抗荧光淬灭封片剂(含DAPI)、蛋白磷酸酶抑制剂(All-inone,100×)购自索莱宝(北京)科技有限公司;
兔来源抗HIF-1α多克隆抗体、兔来源抗Map2多克隆抗体、多聚赖氨酸均购自美国CST公司;
LW6、RIPA裂解液购自上海碧云天生物技术有限公司。
1.2 实验方法
1.2.1 原代神经元培养 取孕18 d的健康SD大鼠,脱颈处死后取出胎鼠,用体积分数0.75的乙醇消毒后置于冰上。在光学显微镜下剥离颅骨、脑膜,机械分离大脑皮质,暂时放在DMEM培养液中。以900 r/min离心5 min,弃掉上清,加入0.5 g/L胰蛋白酶消化20 min,加入胎牛血清培养液终止消化;
以900 r/min离心5 min,弃掉上清,再加入无血清培养液(neurobasal medium 50 mL、B-27 Supplement 1 mL、gluta Max 100× 0.5 mL、青霉素-链霉素(100×)0.5 mL),反复缓慢吹打,滤布过滤;
将细胞以1.2×105/cm2的密度接种于多聚赖氨酸包被过的培养皿和孔板中,24 h后全换液,此后每3 d半换液培养。
1.2.2 OGD/R细胞模型制备及实验分组 神经元培养7 d后,以磷酸盐缓冲液(PBS)轻轻冲洗2次,随机分为Sham组(A组)、OGD/R组(B组)、OGD/R+LW6组(C组)、OGD/R+低浓度Dex组(D组)、OGD/R+高浓度Dex组(E组)。Sham组加入有糖细胞外液,置于正常培养箱中培养;
ODG/R组加入无糖细胞外液,置于37 ℃厌氧箱(内含体积分数0.95的N2和体积分数0.05的CO2)中低氧处理制备OGD/R细胞模型,1 h后将培养液换为无血清培养液;
OGD/R+LW6组:OGD/R模型细胞加入1 mmol/L的LW6处理1 h,加入等体积无血清DMEM培养液;
OGD/R+低浓度Dex组:OGD/R模型细胞加入0.1 μmol/L Dex处理1 h后,弃去原培养液,加入等体积的无血清DMEM培养液;
OGD/R+高浓度Dex组:OGD/R模型细胞加入1.0 μmol/L Dex处理1 h后,弃去原培养液,加入等体积无血清DMEM培养液。
1.2.3 CCK-8比色法检测神经元的存活率 弃掉96孔板中的培养液,用PBS清洗细胞,每孔加入含体积分数0.10 CCK-8的细胞培养液,避光孵育4 h。使用酶标仪检测各孔波长450 nm处的吸光度,计算细胞存活率。
1.2.4 免疫荧光染色法检测神经元的生长状态
原代神经元接种于装有盖玻片的24孔培养板中培养7 d后,取出爬片,用PBS洗3次,每次5 min;
每孔加入1 mL组织固定液固定20 min;
再用PBS洗3次,每次10 min;
以含体积分数0.002 5 Triton-100 溶液破膜10 min,以含体积分数0.05羊血清清蛋白封闭液封闭1 h,加入一抗MAP-2抗体(1∶1 000),4 ℃孵育过夜;
然后加二抗山羊抗体IgG抗體(1∶1 000)室温避光孵育1 h。用含DAPI染料的抗荧光衰减封片剂进行封片后,荧光显微镜下采集图像,观察原代神经元的形态。
1.2.5 Western blot方法检测相关蛋白表达 参照相关文献[10],应用Western blot方法检测皮质神经元内HIF-1α、ATF-6和CHOP蛋白表达水平,使用100 g/L SDS PAGE分析神经元样品。应用一抗(HIF-1α、ATF-6和CHOP 为1∶1 000,β-actin 1∶4 000)和相应二抗(1∶20 000)孵育膜,ECL 显影成像。应用Image J软件对数据进行量化。实验重复3次,取平均值。
1.3 统计学分析
使用Graph Pad Prism 8.0软件进行统计学分析。计量资料结果以±s表示,两组比较采用t检验;
多组比较采用单因素方差分析,组间两两比较采用LSD-t检验。以P<0.05为差异有统计学意义。
2 结 果
2.1 Dex处理对OGD/R损伤后神经元存活影响
CCK-8比色法检测显示,各组神经元存活率差异有显著性(F=63.46,P<0.05);
两两比较,B组细胞存活率较A组降低(P<0.05), C组和E组的神经元存活率较B组显著提高(P<0.05)。见表1。免疫荧光染色观察显示,与Sham组相比,OGD/R处理组神经元数目明显减少;
与OGD/R处理组相比,OGD/R+高浓度Dex处理组神经元数目明显增加,OGD/R+低浓度Dex处理组神经元数目没有变化。免疫荧光结果显示,加入高浓度Dex培养后神经元的存活数目增加(图1)。
2.2 各组HIF-1α、ATF-6和CHOP蛋白表达比较
Western blot结果显示,各组HIF-1α、ATF-6、CHOP蛋白表达差异有统计学意义(F=80.30~155.36,P<0.05)。两两比较显示,OGD/R处理组HIF-1α、ATF-6、CHOP蛋白表达水平均较Sham组升高,差异有统计学意义(P<0.05),OGD/R+高浓度Dex处理组HIF-1α、ATF-6、CHOP蛋白水平较OGD/R处理组降低(P<0.05)。见图2、表1。
3 讨 论
脑卒中是世界范围内死亡率高、致残率高的疾病,其发病后可能给家庭及社会带来沉重负担。本
研究通过大鼠神经元体外模拟脑缺血再灌注损伤,探讨Dex对神经损伤的保护作用及其可能的机制,从而为缺血性脑损伤治疗提供新的方向。
有研究表明,Dex通过抑制HIF-1α的表达发挥神经保护作用[11]。还有研究表明,神经元OGD/R损伤后HIF-1α蛋白表达水平显著提高[12-13]。因此本文检测了OGD/R损伤后的神经元内HIF-1α的表达。为了进一步确定HIF-1α的下游ATF-6、CHOP的蛋白变化,本文通过对OGD/R损伤后神经元模型给予Dex 1.0 μmol/L药物处理来观察HIF-1α下游通路ATF-6、CHOP的蛋白变化,结果表明,Dex促进了OGD/R损伤神经元的存活并且降低了损伤后原代神经元中HIF-1α、ATF-6和CHOP蛋白的表达,表明Dex在OGD/R损伤中通过调节HIF-1α的表达发挥神经保护作用。本文研究结果还显示,低浓度的Dex对OGD/R损伤神经元存活不具有保护作用,而高浓度的Dex提高了OGD/R损伤神经元的存活,发挥了保护作用。
HIF-1由HIF-1α和HIF-1β亞单位组成。每个亚单位都包含基本bHLH-PAS结构域,该结构域介导异源二聚和DNA结合。许多研究已经通过其转录活性确定了HIF-1α在细胞功能和功能障碍中的重要作用。
HIF-1α是具有转录活性的核蛋白,具有广泛的靶基因谱,通过对其下游靶基因的调控,在低氧适应、炎症发展及肿瘤生长等方面均起到重要的调节作用[14]。在OGD/R损伤下HIF-1α表达升高可导致细胞死亡[15],抑制HIF-1α的表达则可能会减轻细胞低氧复氧损伤[16]。研究显示,LW6是HIF-1α的抑制剂[17],其对神经元存活可起到保护作用。因此,本实验将OGD/R损伤+LW6组作为OGD/R的阳性药物对照组进行研究,结果显示LW6对正常培养的神经元存活率和HIF-1α蛋白表达没有明显影响,但高浓度Dex提高了OGD/R损伤神经元的存活率,也显著降低了HIF-1α表达。
DAPI:免疫荧光染色为蓝色,标记各组神经元的细胞核;
Map2:一抗为羊抗兔,二抗为兔来源,免疫荧光染色为红色,标记各组神经元形态;
Merge:将DAPI和Map2合并在一起,显示细胞存活率的变化。
ATF-6是HIF-1α的下游因子。已有研究结果显示,脑卒中后的小鼠内质网应激(ERs)显著增强[18]。越来越多的证据表明,ERs在神经元存活过程中起重要作用。在ERs状态下,ATF-6可易位至细胞核并诱导下游信号蛋白CHOP的表达[19]。研究表明,ERs在神经元存活过程中起重要作用[20],ERs信号通路包括ATF-6、IRE1α和PERK通路。药物作用于ATF-6能够显著减轻细胞凋亡,降低凋亡相关的细胞因子如Caspase3、Caspase6等的表达[21]。CHOP是ERs反应共同下游信号分子,正常生理状态下其表达量低,在ERs状态下大量表达并促进细胞凋亡[22]。脑卒中后神经元可以通过CHOP发出信号并最终导致细胞凋亡发生。本研究结果显示,OGD/R损伤后神经元HIF-1α蛋白表达显著升高,LW6及高浓度Dex作用后HIF-1α、ATF-6及CHOP蛋白的表达水平显著降低,提示抑制HIF-1α的表达可能通过抑制ERs通路减轻OGD/R损伤的神经元凋亡,发挥神经保护作用。
综上所述,Dex对OGD/R损伤的神经元细胞具有保护作用,其机制可能通过下调HIF-1α蛋白表达抑制ATF-6、CHOP信号通路发挥神经保护作用。本文结果可以为开发有效的脑卒中治疗策略提供依据。但ATF-6如何通过下游信号通路发挥神经保护作用尚不清楚,有待后续进一步研究。
[参考文献]
[1]BOURSIN P, PATERNOTTE S, DERCY B, et al. Semantics, epidemiology and semiology of stroke[J]. Soins; La Revue De Reference Infirmiere, 2018,63(828):24-27.
[2]MARKUS H S, BRAININ M, FISHER M. Tracking the global burden of stoke and dementia:
world Stroke Day 2020[J]. International Journal of Stroke, 2020,15(8):817-818.
[3]GU J F, CHEN J, YANG N, et al. Combination of Ligusti-
cum chuanxiong and Radix Paeoniae ameliorate focal cerebral ischemic in MCAO rats via endoplasmic reticulum stress-dependent apoptotic signaling pathway[J]. Journal of Ethnopharmacology, 2016,187:313-324.
[4]MENDELSON S J, PRABHAKARAN S. Diagnosis and ma-
nagement of transient ischemic attack and acute ischemic stroke:
a review[J]. JAMA, 2021,325(11):1088-1098.
[5]PRENTICE H, GHARIBANI P M, MA Z Y, et al. Neuroprotective functions through inhibition of ER stress by taurine or taurine combination treatments in a rat stroke model[J]. Advances in Experimental Medicine and Biology, 2017,975 Pt 1:193-205.
[6]JIANG Q, GENG X K, WARREN J, et al. Hypoxia inducible factor-1α (HIF-1α) mediates NLRP3 inflammasome-depen-
dent-pyroptotic and apoptotic cell death following ischemic stroke[J]. Neuroscience, 2020,448:126-139.
[7]LI H S, ZHOU Y N, LI L, et al. HIF-1α protects against oxidative stress by directly targeting mitochondria[J]. Redox Biology, 2019,25:101-109.
[8]CHEN H A, LI G, TAN G, et al. Dexmedetomidine enhances hypoxia-induced cancer cell progression[J]. Experimental and Therapeutic Medicine, 2019,18(6):4820-4828.
[9]HE Z B, SU H J, WU H T, et al. Dexmedetomidine treatment prevents cerebral ischemic reperfusion injury through HIF-1α/Beclin1-mediated autophagy[J]. Brain Injury, 2023,37(8):706-713.
[10]CUI Y, ZHANG Y, ZHAO X L, et al. ACSL4 exacerbates ischemic stroke by promoting ferroptosis-induced brain injury and neuroinflammation[J]. Brain, Behavior, and Immunity, 2021,93:312-321.
[11]SHI J, YU T X, SONG K, et al. Dexmedetomidine ameliorates endotoxin-induced acute lung injury in vivo and in vitro by preserving mitochondrial dynamic equilibrium through the HIF-1a/HO-1 signaling pathway[J]. Redox Biology, 2021,41:101954.
[12]HU X W, LI L, GONG Y Y, et al. Buyang Huanwu Decoction promotes angiogenesis of rat brain microvascular endothelial cells after oxygen-glucose deprivation reperfusion injury via activation of PI3K-AKT signaling pathway[J]. Journal of Zhejiang University (Medical Sciences), 2022,51(5):544-551.
[13]WEI R H, SONG L J, MIAO Z Y, et al. Hydroxysafflor yellow A exerts neuroprotective effects via HIF-1α/BNIP3 pathway to activate neuronal autophagy after OGD/R[J]. Cells, 2022,11(23):3726.
[14]TIRPE A A, GULEI D A, CIORTEA S M, et al. Hypoxia:
overview on hypoxia-mediated mechanisms with a focus on the role of HIF genes[J]. International Journal of Molecular Sciences, 2019,20(24):6140.
[15]NI H Z, LI J X, ZHENG J Y, et al. Cardamonin attenuates cerebral ischemia/reperfusion injury by activating the HIF-1α/VEGFA pathway[J]. Phytotherapy Research:
PTR, 2022,36(4):1736-1747.
[16]RUAN J X, WANG L, DAI J H, et al. Hydroxysafflor yellow a promotes angiogenesis in rat brain microvascular endothelial cells injured by oxygen-glucose deprivation/reoxygenation(OGD/R) through SIRT1-HIF-1α-VEGFA signaling pathway[J]. Current Neurovascular Research, 2021 18(4):415-426.
[17]XU H R, CHEN Y Q, LI Z C, et al. The hypoxia-inducible factor 1 inhibitor LW6 mediates the HIF-1α/PD-L1 axis and suppresses tumor growth of hepatocellular carcinoma in vitro and in vivo[J]. European Journal of Pharmacology, 2022,930:175154.
[18]YIN Y, SUN G, LI E, et al. ER stress and impaired autopha-
gy flux in neuronal degeneration and brain injury[J]. Ageing Research Reviews, 2017,34:3-14.
[19]XIA T, LIAO Y Q, LI L, et al. 4-PBA attenuates fat accumulation in cultured spotted seabass fed high-fat-diet via regulating endoplasmic reticulum stress[J]. Metabolites, 2022,12(12):1197.
[20]REN J, BI Y G, SOWERS J R, et al. Endoplasmic reticulum stress and unfolded protein response in cardiovascular diseases[J]. Nature Reviews Cardiology, 2021,18(7):499-521.
[21]WANG X H, ZHAO J, GUO H M, et al. CFLAR is a critical regulator of cerebral ischaemia-reperfusion injury through re-
gulating inflammation and endoplasmic reticulum (ER) stress[J]. Biomedecine & Pharmacotherapie, 2019,117:109155.
[22]YANG H, NIEMEIJER M, VAN DE WATER B, et al. ATF6 is a critical determinant of CHOP dynamics during the unfolded protein response[J]. iScience, 2020,23(2):100860.
(本文編辑 黄建乡)
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