葛 瑶,王春燕,刘 琦,郭 静,熊 兵,刘淑鹏,程忠平
自然杀伤(natural killer,NK)细胞是一群CD3-CD56+的先天免疫淋巴细胞,可以快速识别并杀伤病变细胞[1]。近几年国内外关于NK细胞回输所开展的临床实验有很多,研究的疾病主要包括血液系统肿瘤和实体瘤[2]。用于临床回输的NK细胞来源广泛,包括外周血来源、脐带血来源和细胞系来源的NK细胞[3]。其中,外周血来源的NK细胞获取简单,操作方便。外周血来源的NK细胞培养方法主要有饲养层培养法和因子激活法。其中,饲养层培养法虽然其扩增NK细胞的作用十分显著,但是K562细胞作为异源性细胞,存在一定的输入安全隐患[4]。因子激活培养法是通过使用含有白细胞介素(interleukin, IL)-2等细胞因子的培养基激活扩增NK细胞,安全性较高,但此NK细胞纯度存在较大的个体差异,严重影响后续治疗效果[5]。为了对体外培养的NK细胞纯度进行预测,该研究探讨了影响NK细胞体外培养纯度的相关因素,构建一种预测NK细胞纯度的模型,为后续临床诊疗方案的制定提供理论依据。
1.1 捐献者资料收集2020年1月—2022年3月在上海市第十人民医院门诊部体检并同意捐赠外周血用于NK细胞体外培养的93例健康人群的信息,其中男性23例,女性67例;年龄20~73(52±9.16)岁。本研究中93例健康捐献者无家族病史以及无传染病、心脑血管疾病、肝肾疾病或免疫学疾病,同时剔除其他相关人群,如吸烟、酗酒、药物滥用史、怀孕。本研究经上海市第十人民医院医学伦理委员会批准(批号:20K180),患者签署知情同意书。
1.2 NK细胞的体外培养及纯度检测按照药品生产质量管理规范(good manufacturing practice of medical products, GMP)要求,抽取捐献者40~50 ml的外周血,通过密度梯度离心法获取外周血单个核细胞和血浆,使用添加100 IU/ml激活因子的培养基和10%的自体血浆重悬细胞(细胞原始密度为2×106/ml)。培养第0~7天,使用添加激活因子的培养液激活细胞;培养第8~14天使用添加200 IU/ml IL-2的扩增培养液扩增细胞。培养第14天时,采用流式细胞术检测免疫分子CD3、CD56的表达情况。通过检测CD3-CD56+的细胞占总细胞数的百分比,分析NK细胞纯度。
1.3 临床指标收集捐献者外周血采样前的检查数据,共138项指标。① 血常规指标包括:红细胞(red blood cell,RBC)、血红蛋白、红细胞压积、红细胞平均体积、平均血红蛋白量、平均血红蛋白浓度、红细胞分布宽度(red blood cell distribution width,RDW)、红细胞分布宽度标准差(standard deviation of red blood cell volume distribution width,RDW-SD)、白细胞计数、中性粒细胞数、中性粒细胞百分比、淋巴细胞数、淋巴细胞百分比(percentage of lymphocytes,LY%)、嗜酸粒细胞百分比(percentage of eosinophils,EOS%)、嗜碱粒细胞百分比、嗜酸粒细胞数(number of eosinophils,EOS)、嗜碱粒细胞数、单核细胞百分比、单核细胞数、血小板计数、血小板平均体积、血小板压积、血小板分布宽度(width of platelet volume distribution, PDW)。② 生化指标包括:丙氨酸氨基转移酶、总胆红素、直接胆红素、间接胆红素、总蛋白、球蛋白、葡萄糖(glucose, Glu)、总胆固醇、高密度脂蛋白胆固醇、钾、钠、氯、三酰甘油、尿酸、尿素氮、肌酐(creatinine, Cr)。③ 其他指标包括:凝血功能指标、淋巴细胞亚群(T细胞、B细胞和NK细胞)、甲状腺功能指标、免疫抗体指标和肿瘤标志物指标。
1.4 统计学处理将93例捐献者的体检指标及NK细胞纯度信息随机排列,抽取77例作为训练集,16例作为测试集。对训练集中138项临床检测指标进行统计,按照缺失值占比超过0.4的原则进行删除。使用Pearson相关性检验,将剩余的63项临床指标纳入单因素分析,筛选出影响NK细胞纯度的变量。多因素分析采用step AIC函数进行逐步回归,筛得变量重新建立回归模型。在测试集中,分析NK index模型预测纯度与真实纯度的相关性;再对训练集中的自变量进行二分类处理,以NK细胞实际纯度的中位值为截断点,分高低两组,分析训练集和测试集受试者工作特征曲线(receiver operating characteristic curve,ROC)下面积(area under the curve,AUC)。数据采用R语言、Prism 8.0和Excel软件进行分析,以P<0.05为差异有统计学意义。
2.1 NK细胞纯度分布NK细胞纯度流式检测结果显示,93例健康捐献者中,2例捐献者NK的细胞纯度在0.8以上,17例捐献者NK细胞的纯度分布在0.6~0.8,36例捐献者NK细胞的纯度在0.4~0.6之间,26例捐献者NK细胞的纯度分布在0.2~0.4之间,12例捐赠者NK细胞的纯度小于0.2。以上结果说明在相同的因子诱导条件下,NK的细胞纯度存在个体间的差异。
2.2 影响NK细胞纯度的单因素分析单因素分析结果显示,年龄、三碘甲状腺原氨酸(triiodothyronine,T3)、RDW、RDW-SD、Cr、LY%、Glu、EOS%、EOS和PDW与NK细胞体外培养纯度存在统计学意义(P<0.05),见表1。散点图(图1)进一步分析了年龄、T3、RDW、RDW-SD、Cr、LY%、Glu、EOS%、EOS和PDW与NK细胞纯度之间的线性关系,除了LY%与NK细胞纯度之间存在负相关线性关系,其他指标均与NK细胞存在正相关线性关系。
图1 临床检测指标与NK细胞纯度的线性关系图
表1 影响NK细胞纯度的临床检测指标单因素分析
2.3 影响NK细胞纯度的多因素分析及预测模型的建立多因素变量回归分析显示,RDW-SD(P<0.001)、PDW(P<0.001)、Glu(P<0.001)和T3(P<0.1 )为影响NK细胞纯度的关键变量,并以这4个变量重新建立回归模型,最终建立预测模型NK index=-164.557+2.544×RDW-SD +3.730×PDW+4.389×Glu+10.237×T3(R2=0.494,P<0.05)。
2.4 NK index模型预测值与实际值的相关分析在测试集中,对NK index模型的预测纯度与真实纯度做线性相关分析(R=0.725,P=0.001),说明NK index模型预测纯度与真实纯度之间存在较强的统计学意义。见图2。
图2 NK index 模型预测值与真实值的线性关系图
2.5 NK index模型在训练集和测试集中ROC曲线分析利用AUC分析NK index模型对于NK细胞纯度高低的预测能力。结果显示,训练集中NK index模型的AUC为0.815(95%CI=0.753~0.915),见图3;测试集中NK index模型的AUC为0.938(95%CI=0.82.41~1.00),见图4,说明NK index模型对NK细胞纯度高低有较好的预测价值。
图3 训练集中NK index模型的ROC曲线
图4 测试集中 NK index模型的ROC曲线
在NK细胞的临床回输中,通常需要在体外扩增出大量高纯度的NK细胞。使用因子诱导法培养NK细胞时,NK细胞的纯度和数量总是存在较大的个体间差异。通过收集捐献者的外周血进行14 d的体外因子刺激培养,统计结果显示NK细胞纯度在个体间差异较大。为了找到影响NK细胞纯度的指标,该研究收集了常见的临床指标,通过对纳入的68项临床指标进行单因素分析,结果显示,年龄、T3、RDW、RDW-SD、Cr、LY%、Glu、EOS%、EOS和PDW与NK细胞纯度有相关性。研究[6]表明,年龄的增加会降低固有免疫系统功能,但同时也会增加疾病的易感性。与成人相比,老年人的促炎细胞因子、肿瘤坏死因子和IL-6更高,NK细胞的数量也呈现出增加的趋势。本研究显示,年龄的增加也会提高NK细胞纯度,说明年龄的增加可以促进促炎因子的升高,进而增加NK细胞纯度。T3为主要发挥生物活性的甲状腺激素,在固有免疫系统中具有促炎作用,可以促进NK细胞的增殖和活性[7]。本研究显示T3在数值较高时,对应的NK细胞纯度值也较大,说明甲状腺原氨酸可能会促进NK细胞相关受体的活化与表达。RDW为红细胞大小的变异系数,RDW-SD为红细胞分布曲线宽度的实际测量值,两者被广泛应用于炎症性疾病的临床检验,与炎症标志物密切相关,如C反应蛋白、IL-6和肿瘤坏死因子。目前很多学者提出RDW可以作为预测多种疾病的参数,RDW越高,预后越差[8]。Lochowski et al[9]研究提示,RDW-SD>43时,可以作为非小细胞肺癌预后不良的独立因素。在本研究中,RDW和RDW-SD与NK细胞纯度呈现正相关,提示RDW和RDW-SD的升高会促进体内炎性因子的升高,进而促进NK细胞数量和纯度的提高。血清Cr作为最常用的肾脏功能的生物学标志物,用来评估慢性肾病[10]。研究[11]表明,在慢性肾病的研究中,轻度尿毒症患者可以通过增加NK细胞的百分比来影响NK细胞的功能。本研究显示Cr与NK细胞纯度呈现正向相关性,提示Cr作为NK细胞纯度的预测因素可能具有重要意义。Glu是一种关键的细胞燃料, 通过分解可以产生能量分子,促进NK细胞的增殖和代谢[12],因此推测Glu通过产生能量分子,进而提高NK细胞纯度。PDW被定义为血小板大小异质性的指标, 作为血栓炎症条件的风险预测因子的有效性[13],可能会促进NK细胞的增殖和活性作用,在本研究结果中,PDW可能通过促进NK细胞的增殖和活性,进而提高NK细胞的纯度。淋巴细胞和嗜酸性粒细胞都属于白细胞的一部分。研究[14]表明LY%的高低与病情严重程度相关,通常认为人体抵御外来病毒的侵袭主要依赖T淋巴细胞介导的细胞免疫作用,说明LY%的升高可能主要与T淋巴细胞的激活有关。在本研究结果中,LY%与NK细胞纯度数值呈负相关,说明T淋巴细胞的大量激活可能会抑制NK细胞的体外增殖。有研究[15]表明嗜酸粒细胞主要合成、储存和分泌细胞因子、趋化因子和生长因子,说明嗜酸粒细胞可能促进NK细胞的激活和扩增。在本研究结果中,嗜酸粒细胞与NK细胞纯度呈正相关,推测嗜酸粒细胞可能促进NK细胞的激活和扩增来提高NK细胞纯度。
通过对多因素变量的分析,筛选出RDW-SD、PDW、Glu和T3作为NK细胞纯度的预测因素,最终建立了能够较好预测NK细胞纯度的NK index模型。对于纯度不能达到临床回输要求的个体,可以提前告知患者,从而大大缩减了培养的成本。因此,获取临床可用的、简便有效的指标构建NK细胞纯度预测模型具有潜在的科研和社会应用价值。
本研究通过收集常见的临床指标来分析影响NK细胞纯度的因素,但由于该模型还存在一些不足:由于缺少免疫相关的指标,如IgM、IgG、干扰素和肿瘤坏死因子等。本研究对捐献者的免疫状态描述不够全面,后续可进一步探索以免疫学指标为变量所构建模型的预测价值。因此,需要进一步扩大样本量和临床检测指标进行研究,以得到更理想的预测模型。
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